Патологическая анатомия / Педиатрия / Патологическая физиология / Оториноларингология / Организация системы здравоохранения / Онкология / Неврология и нейрохирургия / Наследственные, генные болезни / Кожные и венерические болезни / История медицины / Инфекционные заболевания / Иммунология и аллергология / Гематология / Валеология / Интенсивная терапия, анестезиология и реанимация, первая помощь / Гигиена и санэпидконтроль / Кардиология / Ветеринария / Вирусология / Внутренние болезни / Акушерство и гинекология Orvosi parazitológia / Patológiai anatómia / Gyermekgyógyászat / Patológiás fiziológia / Fül-orr-gégészet / Egészségügyi rendszer szervezése / Onkológia / Neurológia és idegsebészet / Örökletes, génbetegségek / Bőr- és szexuális úton terjedő betegségek / Kórtörténet / Fertőző betegségek / Immunológia és allergia / Hematológia / Valeológia / Intenzív ellátás, érzéstelenítés és intenzív ellátás, elsősegély / Higiéniai, egészségügyi és járványügyi ellenőrzés / Kardiológia / Állatorvos / Virológia / Belgyógyászat / Szülészet és nőgyógyászat
legfontosabb
A projektről
Orvosi hírek
A szerzők számára
Engedélyezett könyvek a gyógyszerről
<< Előző Következő >>

A patológiás kutatás és a dokumentáció jellemzői



A különösen veszélyes fertőzésekkel elhunyt és a gyanús személyek boncolását a szokásos módszerekkel, karanténfertőzésekkel foglalkozó tanácsadók-szakemberek (orvos-chumológus vagy a veszélyes fertőzések osztályának orvosa) jelenlétében végezzük. Az egészségügyi és járványügyi állomások anyagmintáját, valamint laboratóriumi kutatásait a különösen veszélyes fertőzések szakemberei végzik. A posztmortem vizsgálathoz a legkényelmesebb a klasszikus zsigerelés módszer, amelynek során a szerveket külön komplexekben távolítják el, széles hozzáférést biztosítva a holttest szervének vizsgálatához. Néha igénybe vehetik a szervek ellenőrzését és boncolását "a helyükön" anélkül, hogy eltávolítanák őket a holttestből. Ennek a módszernek van néhány előnye, hogy amikor a szervek elvágásra kerülnek, a fertőzött folyadék a holttest üregébe kerül és ezáltal csökkenti az asztali szennyeződést. A fő hátrány a szervek változásainak korlátozott képessége. A Shore szerinti teljes kizsigerelés módszerét nem javasoljuk, mivel egy nagy szervkomplexummal kell operálni, és ezt megelõzi a nagy környezetszennyezés és a fertõzés lehetõsége: permetezés, a folyadék duzzadása a főzõasztalról vagy az asztalról.

A kesztyű letépésének és a kéz sérülésének elkerülése érdekében, ha a tapadást elkülönítik a pleura levelek között, a bordák végeit mellkasi bőrrel vagy rongydarabokkal zárják le.

A gerinccsatorna boncolását csak tudományos célokra végzik. Kényelmesebb a gerinccsatorna előtti kinyitása. Ennek a módszernek számos előnye van, különösen fontos fertőző holttestekkel történő munkavégzés során: 1) nincs szükség a holttest újbóli megfordítására; 2) kizárt a bemetszés véráramlása; 3) a csatorna elõtti kinyitása jobb hozzáférést biztosít a gerincvelõ ganglionokhoz.

A következő betegségeket elsősorban a pestis, kolera és himlős megkülönböztetés képezi: tüdőgyulladás intoxikációs tünetekkel, lymphadenitis és láz; ismeretlen etiológia szepszis; akut bélbetegségek és ételmérgezés; bőrkiütések és láz.

A pestisben meghaltak boncolásakor gondosan megvizsgálják a felületesen elhelyezkedő nyirokcsomókat: submandibularis, nyaki, axillary, inguinalis és femoralis. A nyaki bőrlapot elválasztják a trapezius izom elülső szélétől, amely lehetővé teszi ezen a területen a nyirokcsomók összes fő komplexének megvizsgálását. A mellkason a bőr-izom szárny elválasztódik a hátsó axillary vonalról, míg az axilláris nyirokcsomók széles körű vizsgálata elérhető. Az érgyulladás és a combcsont nyirokcsomóinak megváltoztatása céljából módosított Fisher metszetet alkalmazunk: a fő szakasz bemetszésének alsó sarkából (szeméremrész) két további bemetszést végezzünk jobbra és balra a körgyűrűre.

A belső szervek ellenőrzését és a bakteriológiai vizsgálatokhoz szükséges anyag felvételét jobb a lépben, a májban, a nyirokcsomókban kezdeni. Ezzel a vizsgálati sorrenddel kizárt a szekunder, különösen a bél mikroflóra bejuttatásának lehetősége a szervekbe, ami ismert nehézségeket okozhat a későbbi mikrobiológiai vizsgálatok során.

A jelenlegi helyzetnek megfelelően általában nem ajánlott a pestis miatt meghalók koponyáját kinyitni. A boncolás csak megbízható műszaki ismeretekkel rendelkező személyek számára megengedett. A koponya égetésének pestis esetén a kómában bekövetkező halálozás, a növényzet története vagy a meningeális tünetek epidemiológiai térképe utal. A koponya kinyitásakor a csontokat a lehető legmélyebbre kell vágni. Vésővel történő munkavégzésnél ajánlott, hogy annak vágórészét és a szomszédos szöveteket • szövetdarabokkal ástassa meg, hogy megakadályozzák a fröccsenést az ütés során.

Az elsődleges pulmonális pestis megkülönböztethető a krupusztól, influenzától, antracitól, tularemia-tól, psittarosis tüdőgyulladástól. A pestis tüdőgyulladással szemben a keresztes, a gyulladásos gócokon nincs sok zloty, vágásuk felülete sima. Primer pestis tüdőgyulladásban olyan katarális tracheobronchitist észlelnek, amelyen a nyálkahártyán számos vérzés van, amely krupus tüdőgyulladásban szinte hiányzik. A differenciáldiagnosztika fontos jele a bőr számos vérzése, a serozus membránok és a gyomor nyálkahártya. gyakran megfigyelhető tüdőpestékben.

A szulfa gyógyszerek és antibiotikumok használata jelentősen megváltoztatja a pest patomorfológiáját. A pestis mikrobának kifejezett fibrinolitikus tulajdonságai vannak, ezért általában a fibrin hiányzik a váladékban. A pneumonikus fókuszok és a pestis pestje sima. Az antibakteriális gyógyszerek elnyomják a kórokozó fibrinolitikus tulajdonságait; a váladékban nagy mennyiségű fibrin jelenik meg, amelynek jelenléte bonyolítja a pestis tüdőgyulladás differenciáldiagnosztikáját kruppussal.

Fontos diagnosztikai jele, amely megkülönbözteti a különféle etiológiájú tüdőgyulladást a pestistől, a beteg súlyos testi állapota és a tüdő vizsgálatánál található objektív adatok közötti megfigyelt eltérés.

Az elsődleges pulmonális pestis során a felső légúti nyálkahártya megváltozott, de nem annyira, mint az influenza; a pestisre nem jellemző a tüdő természetének és színének ilyen változásainak kombinációja, mivel három influenza létezik.

Az anthrax tüdőgyulladást szinte mindig kísérik a hasi serozus és a vérzéses vérzés előfordulása a mellhártya üregekben, valamint a vérzéses tracheobronchitis kiterjedt gócok kialakulása. A szibériai fekélyes tüdőgyulladás gyakran szepszissel végződik, amelyet vérzéses meningoencephalitis jellemzi.

A pestis vérzéses meningoencephalitis ritka, melyben nincs olyan súlyos lép hiperplázia, mint a antraxnál.

A megváltozott nyirokcsomók körül a periadenitis és a vérzéses beszivárgás jelentősen megkönnyíti a pest bubóniás formájának differenciáldiagnosztikáját a gennyes lymphadenitis és a tularemia és a negyedik kimerült betegség lymphadenitisből.

A pestis mikrobák felismerése érdekében egy nyitott holttestben az ujjlenyomatok bakterioszkópos vizsgálata elvégezhető közvetlenül a szakaszban. E célból egy üveglemezt enyhén megérintetnek egy új szervmetszés felületéhez. Ha pestisre gyanakszik, akkor az ujjlenyomat-kenetet legjobban a pneumonos fókuszból, a megnagyobbodott nyirokcsomókból és a lépből lehet elvégezni. Minden szervből több nyomat készül. A keneteket metil- vagy etil-alkohollal rögzítjük Nikiforov (alkohol és dietil-éter egyenlõ részei) keverékében 15 percig, majd a keneten maradt alkoholt elégetjük. A kenet csak a láng felett rögzítése elfogadhatatlan, mivel ez nem teljesen fertőtleníti az anyagot, és a kenet ismert veszély. A pestis mikrobát akkor észleljük, ha a kenet metilsznovkékkel, Lefflerkékkel festett, Giemsa-Romanovsky és Gram szerint (a pestisbot gram-negatív). Mikroszkopikusan (merítés alatt tekintve) a pestis mikrobát bipolárisan festették, lekerekített végeivel és kissé duzzadt oldalával. Nem szabad megfeledkezni arról, hogy a pestis mikrobák nagyon hasonlóak a pszeudotuberculosis baktériumokhoz.

A kolera elhalálozottainak boncolásakor figyelmet fordítanak a szigorú halálozás mértékére, mivel az az algid periódusban a korai halálban jelentkezik és 3-4 napig tart. A hashártya viszkózus, ragadós nyálkahártyával van bevonva. A belek csak a bakteriológiai vizsgálathoz szükséges anyag felvétele után nyithatók meg. Az epehólyagot nem nyitják meg, és a cisztás vezeték ligálása után az egészet elválasztják, és külön bankban küldik el bakteriológiai vizsgálat céljából.

A hasonló betegségekkel (ricinusmagokkal és arzénvel történő mérgezés, toxikoinfertőző betegségekkel, diszentériával és toxikus dispepsziával járó) kolera morfológiai differenciáldiagnosztikáját nem mindig lehet biztosan elvégezni.

Jellemző esetekben és korai boncolással a kolera vibriókat rendes kenetekben találják, amelyek nyálkahártyából és székletből származnak, a vékonybél nyálkahártyájából vagy az epehólyag tartalmából (hígított karbolos fuksinnal festettek). A vibrók a hámsejtek és a fehérvérsejtek között rakásokban helyezkednek el, gyakran ugyanabba az irányba, "halak" formájában. A végleges diagnózist azonban bakteriológiai vizsgálattal meg kell erősíteni.

A himlőből elhunytak boncolásakor annak kiküszöbölése ellenére a patológusnak a szórványos esetek lehetőségére kell összpontosítania: a bőr, a szaruhártya, a száj nyálkahártya, az orr, a garat és a belső szervek vizsgálatán túl a heréket is meg kell vizsgálni, mivel a betegség egyik komplikációja orchitis; a koponyaüreg boncolását gyanított encephalitis, meningoencephalitis, encephalomyelitis, valamint a közép- és belső fül középfülgyulladása esetén hajtják végre.

Himlővel gyakran meg kell különböztetni azt bárányhimlővel (himlő-szerű forma), hólyagos rickettsiosissal és kanyaróval. Himlővel a bőrkiütés a legelterjedtebb az arcán, a fejbőrön és az alkaron. Kis himlő mindenhol érett. A bárányhimlőnél a bőrkiütés inkább a testén van. A kiütés elemei eltérő fejlettségűek - a folttól a szárított kéregig. A természetes himlővel rendelkező nyálkahártyán sokkal több kiütés jelentkezik, bárányhimlővel ritka és sok. Himlővel a bőrkiütés többdimenziós, sűrű, mélyen ülő vörös nimbus által körülvett bőr hólyagjában. A bárányhimlővel rendelkező buborékok felületes, pelyhes, egykamrás. A kanyarós kiütések nagy, lágy tapintású papulákból állnak. Himlővel a kiütés sűrű.

A protokollnak fel kell tüntetnie a járványügyi történelem adatait, amelyeket a szövettani, bakteriológiai és virológiai vizsgálatokhoz vesznek, valamint a rögzítő folyadék jellegét.

Összegzésként megjegyezzük, hogy a karanténfertőzésekben boncolkodók boncolásakor a szakaszban minimális számú személynek (patológus, ápoló, járványtan vagy bakteriológus) kell lennie.

Az AIDS-halálozások patológiás vizsgálatának jellemzői

Mindenekelőtt meg kell határozni a magasabb egészségügyi hatóság tájékoztatási eljárását, amikor a holttest azonosításra került (vagy feltételezhető) AIDS-diagnózissal.

Az AIDS-fertőzött állatok gyűjtésének, továbbításának és nyilvántartásának rendje racionalizálása érdekében külön nyilvántartást vezetnek az AIDS-diagnózis eseteiről a holttest patológusa vagy kriminalisztikai vizsgálata során, a patkány vér szerológiai vizsgálata által megerősített patológiás változások összessége alapján, HIV-ellenanyagok ellen. Minden ilyen esetben az egészségügyi intézmény kitölti a „Vészhelyzeti értesítést”, és elküldi azt a regisztráció helyének területi egészségügyi és járványügyi állomására.

Ha az AIDS-t a boncolás során a patológiás folyamatok összessége gyanította, akkor legalább 5 ml vérét a combcsontról (ad hoc) kell továbbítani a megfelelő regionális laboratóriumba. A vért száraz, steril csőbe gyűjtjük, gumidugóval lezárjuk, műanyag zacskóba helyezzük, 3-5% -os klóramin-oldattal kezeljük és tartályba helyezzük.

Úgy gondolják, hogy a HIV elleni szérum ellenanyagok kimutatása a halál után legfeljebb 24 órával lehetséges, de a vizsgálatot nehéz elválasztó vér hemolízise okozza. Ezért a negatív eredmény nem jelenti azt, hogy ebben az esetben nem volt HIV-fertőzés. Ugyanakkor az AIDS kóros diagnózisát csak akkor lehet elvégezni, ha azt HIV elleni antitestek tesztelésével megerősítik.

Azokban az esetekben, amikor postmortem vagy kriminalisztikai boncolás eredményeként AIDS gyanúja merül fel, de a HIV elleni antitestek cadaverikus vérvizsgálata negatív eredményt adott, vagy nem voltak lehetségesek, az egészségügyi intézménynek értesítenie kell az egészségügyi és járványügyi állomást. az AIDS-gyanús betegség helye. Válasszon ki kóros osztályt az AIDS-elhullottak boncolására. Meghatározzák a holttesteknek a patológiás osztályba juttatásának módját, amelyben a boncolást elvégzik. Biztosítják a holttestek speciális járművekkel történő szállítását, valamint a fertőtlenítőszerek és védőruhák (ideértve a „lánckesztyűt is” kesztyű) szállítását, valamint a szervek és szövetek rögzített mintáinak küldését az AIDS kóros anatómiai központjába. A cadaverikus vér HIV elleni antitestek szerológiai vizsgálatának laboratóriumi alapjának meghatározása. A második kórokozó-kórokozó kórokozóinak a járványellenes rendszer betartása biopsziával és boncolási anyaggal végzett munka során.

Óvintézkedések boncoláskor és a műtéti és biopsziás anyag vizsgálatakor. Az AIDS vírus (HIV) a II. Patogenitási csoportba tartozik, ezért a patológia osztály összes orvosi személyzetének szigorúan be kell tartania a speciális utasítások követelményeit.

AIDS-ben vagy annak gyanúja esetén az elhunyt testét speciális címkével kell ellátni, figyelmeztető felirattal: "AIDS!" A post mortem boncolás elvégzése előtt minden résztvevő I. típusú védőruhát visel.

Az összes szerszámot, tárgyat és felületet a nyitás alatt szennyeződött 3% -os klór-amin oldattal kezelik. A szennyvíz kibocsátása a csatornába való nyílás alatt megáll. A mosóvizet vödrökbe vagy más tartályokba gyűjtik, amelyek fertőtlenítő oldatokat tartalmaznak. A szekció bejáratánál tegyen egy fertőtlenítőszerrel megnedvesített szőnyegpadlót. Szövetanyagokkal és biológiai folyadékokkal végzett munka során, vagy ha szükséges, érintkezésbe kerülhet velük szennyezett felületekkel, viseljen gumikesztyűt.

A boncoláshoz használt, vérben vagy más testfolyadékban átitatott ruházatot vízálló tasakba kell helyezni, amelyen a "Vigyázat, AIDS!" Figyelmeztető jelzést kell feltüntetni. A szennyezett anyag egy bizonyos színű műanyag tasakokba helyezhető, amelyeket kizárólag a fertőzött hulladékok gyűjtésére és ártalmatlanítására terveztek.

A laboratóriumokban az összes folyadékkal történő manipulációhoz csak gumiüveggel ellátott mechanikus pipettákat kell használni (a szájban pipettázás tilos!). A kezén lévő összes bőrkárosodást előzőleg szalaggal vagy ujjheggyel kell lefedni. A potenciálisan fertőzött anyaggal végzett összes eljárást és manipulációt rendkívül óvatosan kell elvégezni, hogy elkerüljük a cseppek és aeroszolok képződését. Ha a kéz vagy a test más része vérrel vagy más testfolyadékkal szennyeződik, fertőtlenítő oldattal vagy 70 ° -os alkohollal kell kezelni. Ha gyanú merül fel a fertőzött anyag nyálkahártyáin, azonnal kezelik őket 0,5% kálium-permanganát oldattal, 1% bórsav-oldattal vagy vízfolyással mossák meg a szemet, vagy több csepp 1% ezüst-nitrát oldatot csepegtessenek be, és 1% protargol oldatot csepegtessenek be az orrába, a szájat és a torkot ezután 70 ° -os alkohollal vagy 0,5% kálium-permanganát oldattal vagy 1% -os bórsav oldattal öblítjük.

A fertőzött anyag véletlenszerű permetezése esetén és a munka befejezésekor a laboratóriumi asztalok munkafelületét 3% klóramin oldattal kell fertőtleníteni.

A vért, biopsziát tartalmazó mintát vagy kutatásra küldött steril dobozokon figyelmeztető címkéket kell írni („Vigyázat, AIDS!”). Ha az íj külső felülete szennyezett, akkor azt nátrium-hipoklorid vizes oldatával (5,25% oldat) kell megtisztítani 1:10 hígításban vagy 3% -os klór-amin oldattal. A szállítás során az összes anyagdobozt légmentesen el kell felejteni gumi dugóval és gumikesztyűvel (kesztyűből), és egy második tartályba vagy egy szoros tasakba kell helyezni, amelyet meg kell vizsgálni annak biztosítása érdekében, hogy ne legyenek mechanikai sérülések. A tartályok vagy táskák külső felületét 3% -os klór-amin oldattal kezeljük. A csomaghoz csatolják egy kísérő okmányt, amely feltünteti: Az anyag teljes nevét, életkorát, diagnosztizálását, az anyag bevételének dátumát, az anyag jellegét, az anyagot küldő egészségügyi dolgozó vezetéknevét és beosztását. Az összes anyagot újból feltöltik. A rögzített boncolási anyagot egy külön, zárt helyiségben tárolják. A HIV AIDS vírust tartalmazó anyagok rögzítésére, tárolására, kezelésére, kiadatására és küldésére vonatkozó eljárást a kultúrák, baktériumok, vírusok nyilvántartására, tárolására, kezelésére, kiadagolására és szállítására vonatkozó utasítások szerint hajtják végre.

A potenciálisan fertőzött anyag kezelésekor viseljen védőruházatot (ruhát vagy ruhát), amelyet el kell távolítani a laboratórium elhagyása előtt.

A személyzetnek a munka befejezése után alaposan mosson kezet, és vegye le a ruháját, mielőtt elhagyná a laboratóriumot.

Megnyitás után a holttestet fertőtlenítőszer-oldattal (B-klóramin vagy fehérítő 3% -os oldata) öblítik, fertőtlenítőszerrel átitatott lapba csomagolják, és fém koporsóba vagy fába helyezik, és belülről olajfóliával borítják. На дно засыпают хлорную известь слоем не менее 16 см. Перевозку трупа на кладбище или крематорий осуществляет эвакобригада в сопровождении специалистов отдела особо опасных инфекций территориальной СЭС. Персонал похоронных бюро также должен быть информирован о потенциальной опасности и принимать соответствующие меры предосторожности.

Все потенциально зараженные материалы, использованные для патоморфологических (цитологических) исследований, необходимо подвергать обеззараживанию и только после этого отправлять в утилизацию.

Приводим режимы обеззараживания при текущей дезинфекции различных объектов (табл. 12).

Таблица Дезинфекция объектов при работе с трупами



Объект, подлежащий обеззараживанию Способ обеззараживания Обеззараживающее средство Время контакта
1. Помещение, оборудование Протирание 3% раствор хлорамина В, 3% осветленный раствор хлорной извести Сразу после окончания работы
2.
Защитная одежда, халаты, косынки, ватно-марлевые маски, перчатки
Кипячение 2 % раствор соды или любое моющее средство 30 мин с момента закипания
Погружение 3 % раствор хлорамина Б, из расчета 5 л/кг 120 мин
Автоклавирование Паровоздушная смесь 80—90°С 45 мин
Инактивация ВИЧ в присутствии различных дезинфектантов

Для инактивации ВИЧ вполне достаточны концентрации дезинфицирующих средств, рассчитанные для инактивации ретровирусов: 40% этиловый спирт, 30% изопропиловый спирт, 1% лизол, 5% фенол, 2% формалин, 0,1% гипохлорида и др. (табл. 13).

Таблица 13

Дезинфектант Концентрация, % *Время обработки, мин |
Гипохлорид натрия 0.1 10 |
Глютеральдегид 0,5 1
1,0 5
Параформальдегид 0,5 25
Формальдегид 0,2 5
Изопропиловый спирт 35,0 10
Пропиловый спирт 75,0 1
18,0 1
Этиловый спирт 80,0 1
70,0 10
50,0 10
25,0 5
Поливинилниролидон 5 2
10 1
Перекись водорода 0.3 10
3,0 1
Лизол 0,5 10
Время инактивации ВИЧ в исследуемом аутопсийном и биопсийном материале при его фиксации зависит от объема исследуемого кусочка ткани [Авцын А.П. и др., 1989].

Забор материала для гистологического и бактериологического исследования

Пробы от каждого органа следует брать стерильно, в отдельную банку. Особенное внимание должно быть обращено на недопустимость попадания дезраствора (а при подозрении на холеру и его следов) на инструменты, перчатки и в склянку, куда помещают пробы органов.

Чума. Для постановки бактериологического диагноза у подозрительных на чуму трупов берут увеличенные лимфатические узлы, печень, легкие, селезенку. кишечник, кровь (из сердца или крупных вен), костный мозг из трубчатой кости и грудины. У разложившихся и эксгумированных трупов берут кусок (4— 5 ем длиной) трубчатой кости вместе с костным мозгом (технически удобнее сдать большеберцовую или бедренную кость). При взятии материала из органов забирают наиболее измененные участки. Кусочки помещают в заранее приготовленные стерильные широкогорлые банки в 100—300 мл. Лучше всего каждый кусочек помещать в отдельную банку. Кусочки легкого и кишечника во всех случаях помещают в отдельные банки. Особенно это важно, если материал берут от загнившего трупа. В жаркое время года при дальности расстояния от места вскрытия до лаборатории кусочки органов рекомендуется помещать в одну из следующих консервирующих жидкостей:

1. Жидкость Броке: глицерин — 20 г, вода — 80 г, углекислый кальций — I г. Кусочки размерами 1—2 см помещают в банку с 5—10 мл жидкости. В жидкости Броке материал сохраняется несколько дней.

2. Консервант Берлина и Башевой: парафиновое масло — 3 г, вазелин — 1 г, танолин — 1,5 г. Смесь подогревают до 45°, хорошо смешивают. Кусочки размерами 2—3 см закладывают в смесь, расплавленную при температуре 35—45°С. На кусочек требуется 30—40 г консерванта. Материал может храниться несколько месяцев.

Для гистологических исследований лучше всего брать кусочки от всех органов, а также кусочки тканей из места введения лекарственных препаратов размерами не более 1 см. Для полного обеззараживания материала достаточно фиксации в 10—30% формалине или в 70° спирте.

Холера. Для бактериологического исследования во время вскрытия берут три отрезка тонкого кишечника (верхняя, средняя и нижняя части) длиной около 10 см каждый. Кишку берут невскрытой (после наложения двойных лигатур) помещают в стерильную широкогорлую банку с притертой пробкой. Желчный пузырь после перевязки пузырного протока извлекают целиком и, не вскрывая, помещают в стерильную широкогорлую банку. Учитывая, что холерный вибрион не стоек, материал для бактериологического исследования необходимо доставить в лабораторию как можно быстрее.

Для сохранения холерного вибриона в испражнениях можно использовать консервант Венкатрамена и Рамакиришана: борную кислоту 12,405 г, хлористый калий 14,919 г растворяют в 800 мл горячей дистиллированной воды, по охлаждении доводят количество раствора дистиллированной водой до 1 литра. Из основного раствора берут 250 мл и смешивают с 133,5 мл 0,8% едкого натрия, доводят дистиллированной водой до 1 литра и добавляют 20 г поваренной соли. Фильтруют через бумажный фильтр, разливают по 10 мл в широкогорлые стеклянные баночки и стерилизуют в автоклаве. Стерильный раствор должен иметь рН 8,6—9,0. Консервант может сохраняться в течение нескольких месяцев. Содержимое кишечника в количестве 1—3 г смешивают с консервантом. Не рекомендуется брать комочки слизи более 3 г, так как при этом снижается рН. что ведет к гибели холерных вибрионов. В качестве консерванта может быть предложен также 2% раствор поваренной соли, который разливают в пробирки по 10 мл, стерилизуют автоклавированием при 120°С. Перед внесением материала в консервант нужно добавить 4—5 капель 0,4 % раствора едкого натрия.

Для гистологического исследования лучше брать кусочки от всех органов. Если это не представляется возможным, забор ограничивают кусочками тонкого и толстого кишечника, брыжеечных лимфоузлов, печени, поджелудочной железы и почек.

Натуральная оспа. Существующие методы лабораторной диагностики натуральной оспы разнообразны. Продолжительность вирусологических исследований — до недели, что в значительной мере снижает практическую ценность.

Материал для исследований: содержимое высыпаний на коже и слизистых оболочках (папулы, везикулы, пустулы, корочки и чешуйки), кровь и отделяемое слизистой носоглотки, лимфатические узлы, кусочки печени, селезенки, легких.

Для вирусологических исследований берут кожу с подкожной клетчаткой и кусочки слизистой оболочки (полости рта, носоглотки, гортани, верхних дыхательных путей или влагалища) с наиболее выраженными изменениями. Размеры кусочков 7—8 CM. Кровь берут во время вскрытия из сердца или крупных сосудов. Отделяемое слизистой носоглотки лучше брать до начала вскрытия с помощью стерильных ватных тампонов, помещенных в стерильную пробирку.

Морфологический метод используют для обнаружения элементарных телец и внутриклеточных включений (телец Пашена). Мазок фиксируют жидкостью Руге (1 мг ледяной уксусной кислоты, 2 мг 40% формальдегида, 100 мг дистиллированной воды) — 1 мин; промывка дистиллированной водой; протравка реактивом (5 г танина, 100 мг дистиллированной воды, 1 мг жидкой карболовой кислоты) до появления паров. Тщательно промывают водой. Обрабатывают азотнокислым серебром с подогреванием, до получения темно-коричневой окраски. Приготовление раствора азотнокислого серебра: 5 г кристаллического азотнокислого серебра в 100 мг дистиллированной воды; по каплям добавляют 25% раствора аммиака до исчезновения осадка. При окраске серебром разводят дистиллированной водой в 10 раз. Промывка дистиллированной водой. Сушат на воздухе.

При микроскопии (иммерсия) элементарные тельца Пашена имеют вид мелких (200—300 миллимикрон) округлых образований темно-коричневого или черного цвета, расположенных поодиночке, парами, короткими цепочками или в виде скоплений. Результат считается положительным только при обнаружении характерных телец в массовом количестве.

Тельца Гварниери (цитоплазматические включения) обнаруживаются в клетках зараженной культуры тканей.

При культивировании вируса из кожных высыпаний на куриных эмбрионах положительный результат получается в 90%.

Биологическая проба Пауля ускоряет дифференциальную диагностику натуральной оспы от сходных заболеваний. На роговице кролика делают три насечки, в каждую из них наносят по капле испытуемого материала. При наличии оспы спустя 36—48 часов на месте насечек появляются мелкие прозрачные узелки, которые становятся белыми при погружении экстирпированного глаза в сублимат-алкоголь.

Выявление вируса оспы возможно также с помощью люминесцентного микроскопа. Мазки и отпечатки из кожных поражений фиксируют 10 минут в безводном ацетоне, обрабатывают конъюгированным гамма-глобулином (30 мин), затем тщательно промывают и исследуют. При наличии вируса наблюдается яркое свечение клеток и обрывков тканей. Метод позволяет обнаружить вирус спустя 2 часа после начала исследований.

Для гистологического исследования берут кусочки всех органов. Посев материала на месте вскрытия трупа производит только бактериолог, владеющий методами диагностики особо опасных инфекций.

При отсутствии врача-бактериолога материал для бактериологических и вирусологических исследований направляется патологоанатомом в лабораторию, предусмотренную планом противоэпидемических мероприятий.

СПИД. Порядок фиксации материала для гистологического исследования следующий: вырезанные кусочки органов размерами не более 1x1x0,5 см помечают в фиксирующую жидкость, находящуюся в чистой посуде. На дно ее предварительно помещают кусочек ваты (марли). Объем фиксирующей жидкости должен в 7—10 раз превышать объем-исследуемого материала. Время фиксации: 1 —2 суток и более при комнатной температуре. Материал хранить в специально отведенном месте под замком.

Для патологогистологического исследования в случаях, подозрительных на СПИД, следует брать головной мозг (обязательно из области подкорковых ганглиев и белого вещества полушарий), спинной мозг, легкие (даже при отсутствии макроскопически видимых воспалительных изменений), органы желудочно-кишечного тракта (кусочки из всех отделов кишечника должны быть исследованы микроскопически после тщательной макроскопии), органы иммуногенеза (костный мозг, вилочковая железа, лимфоузлы, селезенка), печень, почки, сердце, при показаниях — сетчатку глаза, кожу, слизистую полость рта, наружных гениталий. Кусочки помещают в обычные фиксаторы (формалин, жидкость Карнуа, 80° спирт и др.).

Во всех случаях прижизненно подтвержденного СПИДа или при подозрении на СПИД, следует направлять кровь из полости сердца на бактериологическое исследование.

Как уже отмечалось выше, роль патологогистологического исследования диагностических биопсий и операционного материала (особенно лимфатических узлов, кожи, легких, кишечника) в выявлении случаев заболевания, подозрительных на СПИД, очень велика [Авцын А.П. и др., 1989 ].

При обнаружении в биоптате оппортунистических инфекций и (или) опухолей, характерных для СПИДа у лиц до 60 лет, патологоанатом обязан отразить в своем заключении необходимость обследования больного на антитела к ВИЧ или непосредственно сообщить об этом лечащему врачу. При составлении заключения следует проявлять осторожность и избегать необоснованной излишней диагностики СПИДа, учитывая, что это может вызвать серьезные этические проблемы для родственников умершего и всех лиц, находившихся с ним в контакте.

В патологоанатомическом диагнозе, в качестве основного заболевания указывают: (положительная реакция на антитела ВИЧ в сыворотке крови). Далее перечисляют инфекции (опухоли). В справке о смерти первоначальной причиной смерти указывают СПИД, непосредственной — наиболее тяжелую оппортунистическую инфекцию.

Особенности забора и исследования секционного материала при некоторых инфекционных заболеваниях приводятся в следующей главе.

Тактика патологоанатома при случайном обнаружении на секции особо опасного инфекционного заболевания

Если во время секции возникли серьезные подозрения, что смерть больного последовала от особо опасного инфекционного заболевания, принимаются меры, направленные на предупреждение возможного распространения инфекции. Вскрытие прекращают, труп покрывают простыней, не смоченной дезинфицирующими веществами. Если одновременно производилось несколько вскрытий, то они также прекращаются. Закрывают окна и форточки в секционной для защиты помещения от залета мух. Запрещается вход в секционную лицам без защитной одежды. Прекращают сток промывных вод, которые собирают в ведра, содержащие дезинфицирующие растворы. О предварительных результатах вскрытия необходимо немедленно поставить в известность главного врача лечебного учреждения и органы здравоохранения (по подчиненности). Для этого посылают кого-либо из лиц, не находившихся в секционной. Все присутствующие во время вскрытия должны быть удалены посте обработки из*секционной в соседнее помещение, кроме прозектора и санитаров. Прозектор и санитары снимают халаты и фартуки, в которых начали вскрытие, и переодеваются в защитную одежду, предварительно обработав открытые части тела дезраствором и слизистые оболочки: при чуме — раствором стрептомицина (на 1 мл — 250 тыс. ЕД), при холере — тетрациклином (на 1 мл — 200 тыс. ЕД) и оспе — 0,5% раствором марганцовокислого калия. Проводят текущую дезинфекцию помещения, инструментов.

После прибытия специалистов по особо опасным инфекциям вскрытие продолжают и забирают материал для лабораторных исследований. Если прибытие консультантов невозможно, патологоанатом производит вскрытие трупа и забор материала самостоятельно. Все лица, находившихся в контакте с трупом, после проведения экстренной профилактики изолируют до бактериологического выяснения диагноза или на срок инкубационного периода заболевания. Дальнейшие меры принимаются в соответствии с планом противоэпидемических мероприятий.

Для правильной организации работы патологоанатомического отделения всегда должна учитываться возможная необходимость вскрытия умерших от особо опасных заболеваний. В отделении необходимо иметь два-три полных комплекта спецодежды или несколько готовых укладок, которые содержат защитные противочумные костюмы, приборы для проведения дезинфекции, неприкосновенный запас дезинфицирующих средств, стерильную посуду для забора материала. Персонал должен владеть мерами личной профилактики при карантинных инфекциях.

Транспортировка и захоронение

Эти сведения необходимы патологоанатому, особенно периферийных больниц, для контроля за эпидемической ситуацией.

После вскрытия все внутренние органы и головной мозг укладывают соответственно в грудную и брюшную полости, а также в полость черепа куда затем закладывают ветошь, обильно смоченную 5% раствором лизола. Зашивать труп умерших от особо опасных инфекций, как это принято в обычных условиях, не обязательно. Труп, завернутый и завязанный в простыни, смоченные 5—10% раствором лизола, укладывают в плотный ящик (гроб) из толстых досок, на дно которого насыпают хлорную известь слоем не менее 10 см; труп, уложенньй в гроб, засыпают сверху толстым слоем хлорной извести и закрывают крышкой.

Общее руководство и ответственность за правильную транспортировку, обеззараживание, порядок захоронения трупов, подозрительных или с заведомо особо опасными инфекциями, возлагается на руководителя санэпидстанции города или района. Для работы (рытье могилы, транспортировка, захоронение или сжигание трупа) выделяется не менее трех санитаров.

Перевозка трупов к месту захоронения или сожжения производится на любом транспорте. При наличии специализированного стационара используют прикрепленный к нему транспорт. Технический персонал, принимающий участие в транспортировке трупа, его захоронении или сожжении, должен быть проинструктирован об особенностях работы и технике безопасности, а при ряде инфекций — провакцинирован.

Захоронение трупа производится в гробу или без него, в зависимости от обычаев местного населения. При укладывании в гроб, в котором будет захоронен труп, его выстилают клеенкой во избежание растекания жидкости. При захоронении без гроба труп завертывают в простыню, смоченную дезраствором, а затем в клеенку. Умершие от сибирской язвы хоронятся обязательно в гробу. Погребение умерших от холеры, натуральной оспы и ряда других инфекций можно производить на обычном кладбище. При захоронении трупов роют яму длиной 2 м, шириной 1 м и глубиной около 2 м. На ее дно насыпают слой хлорной извести толщиной 5—10 см. Опущенный в могилу труп также засыпают хлорной известью. Могилу засыпают землей. При вскрытии трупа на краю могилы первой сбрасывают землю (перемешанную с известью), из которой была сделана насыпь для вскрытия.

Для сжигания трупа приготавливают яму длиной 2 м, шириной 1 м и глубиной около 1,5 м. Короткие стороны ямы срывают в виде откосов под углом в 45° для создания лучшей тяги. Для сжигания используют дрова, накладывая их в яму высотой около 1 м, и обильно поливают мазутом, керосином или бензином (5—6 ведер). На дрова кладут труп (не развертывая простыни), который слегка обкладывают дровами и еще раз обливают керосином или бензином. Горение продолжается 4—6 часов и заканчивается полным испепелением трупа. На месте сжигания на все время горения трупа выставляется охрана. После сжигания яму засыпают. Сжигание трупов вне крематория производится только в исключительных случаях, когда по каким-либо причинам нельзя произвести захоронение.

По окончании погребения транспорт и ящик для перевозки трупов, а также спецодежда и все, что было в соприкосновении с трупом, подвергается дезинфекции на месте. Целесообразно часть загрязненного инвентаря сжечь. О сжигании или погребении трупа составляется акт, в котором перечисляются также все вещи, уничтоженные при захоронении (простыни, клеенка, гроб и др.).

В заключение подчеркнем, что работа с особо опасными инфекциями требует точного выполнения всех требований действующих инструкций, также как и при патологоанатомическом исследовании трупов, содержащих радиоактивные вещества (защитные костюмы, дозиметрия и др.).

<< Előző Következő >>
= Ugrás a tankönyv tartalmához =

Особенности патологоанатомического исследования и оформления документации

  1. A boncolási protokoll regisztrációja, kóros diagnózis, klinikai és patológiás epicrízis, következtetés és halálos igazolás
    A boncolási protokoll regisztrációja, kóros diagnózis, klinikai és patológiás epicrízis, a következtetés és igazolás
  2. ДОКУМЕНТАЦИЯ И ЕЕ ОФОРМЛЕНИЕ
    С целью обеспечения государственной отчетности «Талон амбулаторного пациента» и его автоматизированная обработка позволяют осуществлять: • учет и формирование регистра населения, обслуживаемого амбулаторно-поликлиническим учреждением; • сбор и формирование статистической информации по законченному случаю, оказанным медицинским услугам, временной нетрудоспособности, фармакологическим
  3. Особенности патологоанатомического исследования акушерской патологии
    Случаи акушерской патологии в патологоанатомической практике встречаются относительно редко. Комплекс акушерских пособий, хирургических вмешательств, массивных терапевтических и реанимационных мероприятий ставит перед патологоанатомом, исследующим случаи смерти при патологии беременности, родов и послеродового периода, очень сложную, нередко трудноразрешимую проблему дифференциации
  4. Patoanatómiai diagnózis regisztrálása
    Az elméleti és gyakorlati orvoslás sikeres fejlesztésével összefüggésben a diagnózis elméletének fejlesztése nagy jelentőséggel bír. Különösen fontosak a patoanatómiai diagnózis általános alapelvei, a patoanatómiai diagnózis megfogalmazása és felépítése, mint a betegség, szindróma, kóros folyamat vagy kóros állapot ismeretének utolsó szakasza [Abrikosov AI, 1947;
  5. Особенности ветеринарно-санитарной экспертизы мяса и мясных продуктов на продовольственных рынках (документация, правила доставки, последовательность осмотра и методы исследования).
    Ветсанэкспертизу туш и внутренних органов проводит ветеринарный врач. Мясо и мясопродукты, осмотренные и заклейменные вне рынка и доставленные для продажи на рынке, также подлежит обязательной ветсанэкспертизе в лабораториях. Ветеринарно-санитарной экспертизе на рынках подлежит: - мясо всех видов убойных животных и пернатой дичи, используемые в пищу в данной местности, которое
  6. Оформление клинико-патологоанатомического эпикриза и заключения о причине смерти
    A patológus véleményét a thatogenezisről, a halál kezdetének mechanizmusairól, figyelembe véve a klinikai és morfológiai adatokat, bemutatják a klinikai és patológiás epikrizisben, amely az orvos megítélését tartalmazza a halál okáról. A halál okával kapcsolatos következtetés megismerhetőbb a rokonok és a nem orvosi osztályok képviselői számára, akik kötelesek megismerkedni a szolgálatban lévő kóros dokumentációval. több
  7. ОСОБЕННОСТИ ПАТОЛОГОАНАТОМИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ ПЛОДОВ, УМЕРШИХ НОВОРОЖДЕННЫХ И ДЕТЕЙ
    Секционная техника трупов плодов, новорожденных и детей имеет ряд особенностей, отличающихся от изложенных выше приемов исследования трупов взрослых. При оценке морфологических изменений на трупах младенцев нельзя руководствоваться критериями патологической анатомии взрослого организма, из-за возрастных проявлений физиологических и патологических реакций физиологическая желтуха, альбуминурия,
  8. НЕКОТОРЫЕ ОСОБЕННОСТИ ПАТОЛОГОАНАТОМИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ, СВЯЗАННЫЕ С ХАРАКТЕРОМ ПАТОЛОГИИ
    НЕКОТОРЫЕ ОСОБЕННОСТИ ПАТОЛОГОАНАТОМИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ, СВЯЗАННЫЕ С ХАРАКТЕРОМ
  9. A gyermekgyógyászati ​​gyakorlatban a kóros diagnózis megtervezésének alapelvei
    Az egyik nagyon nehéz kérdés a holttest morfológiai változásainak értelmezése és a patológiás diagnózis felépítése a prenatális és perinatális időszakokban. Ebben a korban a magzat és az újszülött patológiája és halálának oka nagyrészt az anya-magzat kölcsönhatásának okainak összetettsége. Néhányan a magzat boncolására telepítik, amely bizonyos
  10. A patoanatómiai diagnózis és az orvosi halálos igazolás elkészítésének alapelvei
    A klinikusok és patológusok interdiszciplináris megértésének alapelveinek a szepszis egyértelmű nosológiai azonosításán kell alapulniuk az ICD-10 kódok nélkülözhetetlen felhasználásával: • szepszis a helyi gyulladásos folyamatok szövődményeként, műtéti beavatkozások, sérülések; • szepszis, mint független nosológiai egység - a halál kezdeti (fő) oka; • szepszis mint megnyilvánulás
  11. ОБЩИЕ ПРАВИЛА ПРОВЕДЕНИЯ ПАТОЛОГОАНАТОМИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ
    Следующие разделы руководства посвящены требованиям к профессии патологоанатома — умению производить патологоанатомические исследования трупов (взрослых, детей, новорожденных). Общепринятый порядок патологоанатомического исследования тела умершего больного включает в себя следующие последовательные этапы: 1) изучение всей доступной медицинской информации об умершем и составлении плана
  12. ИЗВЛЕЧЕНИЕ И ПАТОЛОГОАНАТОМИЧЕСКОЕ ИССЛЕДОВАНИЕ ОРГАНОВ
    Порядок патологоанатомического исследования извлеченных из полостей черепа и тела органов может быть различным и диктоваться предполагаемой или точно клинически установленной причиной смерти, а также избранным планом вскрытия полное извлечение органов в комплексе или последовательное извлечение отдельных органов и систем для изучения и протоколирования). По ходу вскрытия могут также возникнуть
  13. Патологоанатомические исследования
    Патологоанатомическое исследование сталкивается не только с медицинскими, но и юридическими задачами. Поэтому порядок проведения вскрытия регламентируется соответствующими законами, приказами и инструкциями. В лечебно-профилактических учреждениях действует следующий порядок проведения патологоанатомического исследования трупов. Трупы больных, умерших в лечебно-профилактических учреждениях, как
Orvosi portál "MedguideBook" © 2014-2019
info@medicine-guidebook.com